測定意義：

TH位于線(xiàn)粒體的內膜上，又稱(chēng)為線(xiàn)粒體復合體六，催化NADH+NADP⁺和NAD⁺+NADPH相互轉化，調節線(xiàn)粒體NAD(H)和NADP(H)平衡。把逆向反應稱(chēng)為TH-2，催化NADPH和NAD⁺生成NADP⁺和NADH。

測定原理：

NADH和NADPH均在340nm有特征吸收，因此TH催化的轉氫反應不能導致340nm吸光度發(fā)生變化。用人工合成底物3-乙酰吡啶腺嘌呤二核苷酸（APAD⁺）替代NAD⁺，TH-2催化APAD⁺還原生成APADH，APADH在375nm有特征光吸收，測定375nm光吸收的增加速率，來(lái)計算TH-2活性。

試劑的組成和配制：

需自備的儀器和用品：

可見(jiàn)分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、1mL玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

樣本的前處理：

組織、細菌或細胞中胞漿蛋白與線(xiàn)粒體蛋白的分離：

1、準確稱(chēng)取0.1g組織或收集500萬(wàn)細菌或細胞，加入1mL試劑一，用冰浴勻漿器或研缽勻漿。

2、將勻漿600g，4℃離心5min。

3、棄沉淀，將上清液移至另一離心管中，11100g，4℃離心10min。

4、上清液即為除去線(xiàn)粒體的胞漿蛋白，可用于測定從線(xiàn)粒體泄漏的TH-2（此步可選做）。

5、步驟4中的沉淀即為線(xiàn)粒體，加入500uL試劑二，超聲波破碎（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10秒，重復30次），用于TH-2活性測定。

測定步驟：

1、 分光光度計預熱30min以上，調節波長(cháng)至375nm，蒸餾水調零。

2、 樣本測定

（1）工作液的配制：臨用前取試劑三、試劑四和試劑五各一支，將試劑四、五轉移到試劑三中混合溶解，置于37℃（哺乳動(dòng)物）或25℃（其它物種）水浴5min；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

（2）在1mL玻璃比色皿中加入100μL樣本和1000μL工作液，混勻，立即記錄375nm處初始吸光值A1和10min后的吸光值A2，計算ΔA=A2-A1。

TH-2活性計算：

（1） 按樣本蛋白濃度計算

單位的定義：每mg組織蛋白每分鐘產(chǎn)生1 nmol APADH定義為一個(gè)酶活性單位。

 TH-2活性（nmol/min /mg prot）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(V樣×Cpr)÷T=164×ΔA÷Cpr

（2） 按樣本鮮重計算

單位的定義：每g組織每分鐘產(chǎn)生1 nmol APADH定義為一個(gè)酶活性單位。

TH-2活性（nmol/min/g 鮮重）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(W× V樣÷V樣總) ÷T=82×ΔA÷W

（3） 按細菌或細胞密度計算

單位的定義：每1萬(wàn)個(gè)細菌或細胞每分鐘產(chǎn)生1 nmol APADH定義為一個(gè)酶活性單位。

TH-2活性（nmol/min/104 cell）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(500×V樣÷V樣總) ÷T=0.164×ΔA

V反總：反應體系總體積，1.1×10-3L；ε：APADH摩爾消光系數，6.7×103 L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm；V樣：加入樣本體積，0.1mL；V樣總：加入提取液體積，0.5mL；T：反應時(shí)間，10 min；Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/mL；W：樣本質(zhì)量，g；500：細菌或細胞總數，500萬(wàn)。