測定意義：

淀粉磷酸化酶（Starch Phosphorylase，SP）是淀粉代謝過(guò)程唯一的可逆反應酶，既可催化淀粉的合成，也可催化淀粉的分解。

在高等植物中，淀粉磷酸化酶（合成方向）主要存在于質(zhì)體中，負責延長(cháng)淀粉的 α-1,4-葡萄糖鏈的非還原末端；淀粉磷酸化酶（分解方向）主要存在于細胞質(zhì)基質(zhì)中，催化淀粉中的α-1,4-糖苷鍵磷酸解產(chǎn)生葡萄糖-1-磷酸，負責葡萄糖鏈的磷酸解，是淀粉代謝過(guò)程中的關(guān)鍵酶。

在植物體中，淀粉磷酸化酶分解方向的底物無(wú)機磷濃度比合成方向的底物葡萄糖-1-磷酸濃度幾乎高了兩個(gè)數量級，一般認為淀粉磷酸化酶只催化淀粉的分解，因此，分解方向的淀粉磷酸化酶具有重要測定意義。

測定原理：

淀粉磷酸化酶催化淀粉中的α-1,4-糖苷鍵與無(wú)機磷反應產(chǎn)生葡萄糖-1-磷酸，葡萄糖-1-磷酸在磷酸葡萄糖變位酶的作用下產(chǎn)生葡萄糖-6-磷酸，并在6-磷酸葡萄糖脫氫酶催化下還原NADP+產(chǎn)生NADPH，使340nm下吸光值增加。

組成：

試劑二：粉劑×1瓶，-20℃保存；臨用前加入3ml水溶解，用不完的試劑分裝后-20℃保存；

試劑三：粉劑×1支，-20℃保存；臨用前加入3ml水溶解，用不完的試劑分裝后-20℃保存。

自備儀器和用品：

紫外分光光度計、臺式離心機、可調式移液器、1ml石英比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

樣本的前處理：

1、組織：按照組織質(zhì)量（g）：提取液體積(ml)為1：5~10的比例（建議稱(chēng)取約0.1g組織，加入1ml提取液）進(jìn)行冰浴勻漿，然后10000g，4℃，離心10min，取上清待測。

2、細菌、真菌：按照細胞數量（10⁴個(gè)）：提取液體積（ml）為500~1000：1的比例（建議500萬(wàn)細胞加入1ml提取液），冰浴超聲波破碎細胞（功率300w，超聲3秒，間隔7秒，總時(shí)間3min）；然后10000g，4℃，離心10min，取上清置于冰上待測。

測定步驟：

1、分光光度計預熱30min以上，調節波長(cháng)至340nm，蒸餾水調零；

2、工作液的配制：臨用前將試劑一、試劑二、試劑三按照每個(gè)樣本850μL:50μL:50μL的比例混合，臨用前配制，半小時(shí)內使用。

3、在1ml石英比色皿中加入50μL樣本和950μL工作液，立即混勻，記錄340nm處1min時(shí)的吸光值A1和6min時(shí)的吸光值A2，計算ΔA=A2-A1。

SP活力單位的計算：

（1）按樣本蛋白濃度計算

單位定義：每mg組織蛋白每分鐘產(chǎn)生1nmolNADPH定義為一個(gè)酶活力單位。

SP（nmol/min/mgprot）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(V樣×Cpr)÷T

=943×ΔA÷Cpr

（2）按樣本鮮重計算

單位定義：每g組織每分鐘產(chǎn)生1nmolNADPH定義為一個(gè)酶活力單位。

SP（nmol/min/g鮮重）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(W×V樣÷V樣總)÷T

=943×ΔA÷W

（3）按樣本細胞計算

單位定義：每萬(wàn)個(gè)細胞每分鐘產(chǎn)生1nmolNADPH定義為一個(gè)酶活力單位。

SP（nmol/min/104cell）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(細胞數量×V樣÷V樣總)÷T

=1.886×ΔA

V反總：反應體系總體積，1×10^-3L；ε：NADPH摩爾消光系數，6.22×10³L/mol/cm；d：比色皿光徑，1cm；V樣：加入樣本體積，0.05ml；V樣總：加入提取液體積，1ml；T：反應時(shí)間，5min；Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/ml；W：樣本質(zhì)量，g；細胞數量，500萬(wàn)。