測定意義：

丙酮酸羧化酶(pyruvate carboxylase，PC，EC 6.4.1.1)廣泛存在于動(dòng)物、霉菌和酵母的線(xiàn)粒體中，催化丙酮酸、ATP、CO₂和水生成草酰乙酸、ADP和Pi，是糖異生過(guò)程的第一個(gè)限速酶，在保證血糖的動(dòng)態(tài)平衡方面起著(zhù)重要的作用。

測定原理：

PC催化丙酮酸、ATP、CO2和水生成草酰乙酸、ADP和Pi，蘋(píng)果酸脫氫酶進(jìn)一步催化草酰乙酸和NADH生成蘋(píng)果酸和NAD+，在340nm下測定NADH氧化速率，即可反映PC活性。

組成：

自備儀器和用品：

分光光度計、臺式離心機、可調式移液器、1 ml石英比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

樣本的前處理：

組織、細菌或細胞中胞漿蛋白與線(xiàn)粒體蛋白的分離：

1、 稱(chēng)取約0.1g組織或收集500萬(wàn)細菌或細胞，加入1ml提取液，用冰浴勻漿器或研缽勻漿。

2、 將勻漿600g，4℃離心5min。

3、 棄沉淀，將上清液移至另一離心管中，11000g，4℃離心10min。

4、 上清液即胞漿提取物，可用于測定從線(xiàn)粒體泄漏的PC（此步可選做）。

5、 在步驟④的沉淀中加入1ml提取液，超聲波破碎（冰浴，功率20％或200W，超聲3秒，間隔10秒，重復30次），用于線(xiàn)粒體PC活性測定。

測定步驟：

1、 分光光度計預熱30min以上，調節波長(cháng)至340nm，蒸餾水調零。

2、 工作液的配制：臨用前將試劑二和試劑三轉移到試劑一中混合溶解待用；置于37℃(哺乳動(dòng)物)或25℃(其它物種)預熱5分鐘；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

3、 試劑四的配制：在試劑四瓶中加入2.5ml蒸餾水充分溶解待用；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

4、在1ml石英比色皿中加入50μl樣本、50μl試劑四和900μl工作液，立即混勻，記錄340nm處初始吸光值A1和 2min后的吸光值A2，計算ΔA=A1-A2。

注意：在該試劑盒中，若ΔA大于0.5，需將樣本用提取液稀釋適當倍數后測定，使ΔA小于0.5可提高檢測靈敏度。計算公式中乘以相應稀釋倍數。

PC活性計算：

（1）按樣本蛋白濃度計算

單位定義：每mg組織蛋白每分鐘消耗1nmol NADH定義為一個(gè)酶活力單位。

PC（nmol/min/mg prot）＝[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹]÷(V樣×Cpr) ÷T=1608×ΔA÷Cpr

（2）按樣本鮮重計算

單位定義：每g組織每分鐘消耗1 nmol NADH定義為一個(gè)酶活力單位。

PC（nmol/min /g 鮮重）＝[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹]÷(W ×V樣÷V樣總)÷T=1608×ΔA÷W

（3）按細菌或細胞密度計算：

單位定義：每1萬(wàn)個(gè)細菌或細胞每分鐘消耗1 nmol NADH定義為一個(gè)酶活力單位。

PC（nmol/min /10⁴ cell）＝[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹]÷(500×V樣÷V樣總)÷T=3.215×ΔA

V反總：反應體系總體積，1×10^-3 L；ε：NADH摩爾消光系數，6.22×10³ L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm；V樣：加入樣本體積，0.05 ml；V樣總：加入提取液體積，1 ml；T：反應時(shí)間，2 min；Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/ml；W：樣本質(zhì)量，g；500：細菌或細胞總數，500萬(wàn)。