測定意義：

AsA作為植物細胞一個(gè)重要生理指標，其AsA 的含量、氧化還原狀態(tài)(AsA/DHA 比率)及其合成與代謝相關(guān)酶類(lèi)活性的變化涉及植物對一系列環(huán)境脅迫的響應。DHA是AsA的可逆的氧化型，在生物體內，與抗壞血酸共同組成氧化還原系統，具有電子受體的作用。

測定原理：

DTT還原DHA生成AsA，通過(guò)測定體系中AsA的生成速率，即可計算出DHA含量。

組成：

試劑三：粉劑×1瓶，4℃保存。臨用前加入5ml蒸餾水充分溶解。

標準品：粉劑×1瓶， 4℃保存。臨用前加入5.743 ml蒸餾水充分溶解；吸取0.1 ml上述溶液，加入0.9 ml蒸餾水，混勻，即為100μmol/L DHA。

自備儀器和用品：

低溫離心機、紫外分光光度計/酶標儀、微量石英比色皿/96孔板（UV板）、可調式移液器、研缽、冰和蒸餾水。

樣品中DHA提?。?/span>

組織：按照組織質(zhì)量（g）：試劑一體積(ml)為1：5~10的比例（建議稱(chēng)取約0.1g組織，加入1ml試劑一）進(jìn)行冰浴勻漿。12000g，4℃離心20min，取上清置冰上待測。

2. 細菌、真菌：按照細胞數量（10⁴個(gè)）：試劑一體積（ml）為500~1000：1的比例（建議500萬(wàn)細胞加入1ml試劑一），冰浴超聲波破碎細胞（功率300w，超聲3秒，間隔7秒，總時(shí)間3min）；12000g，4℃離心10min，取上清液置于冰上待測。

3. 血清等液體：直接測定。

DHA測定操作：

1. 分光光度計/酶標儀預熱30 min，調節波長(cháng)到265 nm，蒸餾水調零。

2. 試劑二在25℃水浴鍋中預熱30 min。

3. 標準管：依次在微量石英比色皿/96孔板加入20μl標準液、160μl預熱的試劑二和20μl試劑三，迅速混勻后于265nm比色，記錄10s和130s的吸光值A1和A2，△A空白管=A2-A1。

4. 測定管：依次在微量石英比色皿/96孔板加入20μl上清液、160μl預熱的試劑二和20μl試劑三，迅速混勻后于265nm比色，記錄10s和130s的吸光值A3和A4，△A測定管=A4-A3。

注意：標準管只需測定一次。

計算公式：

a.使用微量石英比色皿測定的計算公式如下

(1). 按蛋白濃度計算

DHA(nmol/mg prot) =[C標準液×△A測定管÷△A標準管×V標準]÷（Cpr×V樣）

=100×△A測定管÷△A標準管÷Cpr

(2). 按樣本質(zhì)量計算

DHA(nmol/g 鮮重) =[C標準液×△A測定管÷△A標準管×V標準]÷(W×V樣÷V樣總)

=100×△A測定管÷△A標準管÷W

(3). 按細胞數量計算

DHA(nmol/10⁴ cell) =[C標準液×△A測定管÷△A標準管×V標準]÷(W×V樣÷V樣總)

=100×△A測定管÷△A標準管÷細胞數量

（4）按液體體積計算

DHA(nmol/ml) =[C標準液×△A測定管÷△A標準管×V標準]÷V樣

=100×△A測定管÷△A標準管

C標準液：100μmol/L；V樣總：上清液總體積，1.0 ml=1 ×10^-3 L；V標準：加入標準品體積，0.02ml；V樣：加入樣本體積，0.02ml；Cpr：上清液蛋白質(zhì)濃度，mg/ml；W：樣品質(zhì)量（g）。

b.使用96孔板測定的計算公式如下

(1). 按蛋白濃度計算

DHA(nmol/mg prot) =[C標準液×△A測定管÷△A標準管×V標準]÷（Cpr×V樣）

=100×△A測定管÷△A標準管÷Cpr

(2). 按樣本質(zhì)量計算

DHA(nmol/g 鮮重) =[C標準液×△A測定管÷△A標準管×V標準]÷(W×V樣÷V樣總)

=100×△A測定管÷△A標準管÷W

(3). 按細胞數量計算

DHA(nmol/10⁴ cell) =[C標準液×△A測定管÷△A標準管×V標準]÷(W×V樣÷V樣總)

=100×△A測定管÷△A標準管÷細胞數量

（4）按液體體積計算

DHA(nmol/ml) =[C標準液×△A測定管÷△A標準管×V標準]÷V樣

=100×△A測定管÷△A標準管

C標準液：100μmol/L；V樣總：上清液總體積，1.0 ml=1×10^-3 L；V標準：加入標準品體積，0.02ml；V樣：加入樣本體積，0.02ml；Cpr：上清液蛋白質(zhì)濃度，mg/ml；W：樣品質(zhì)量（g）。

注意事項：

1. 臨用前配制的試劑未使用完的4℃保存，3天內使用完。

2. 最低檢出限為10μmol/L。