測定意義：

磷酸戊糖途徑途徑中6-磷酸葡萄糖脫氫酶（G6PDH）和6PGDH依次催化NADPH合成，與能量的平衡、生長(cháng)速率和細胞活力等密切相關(guān)。此外，6PGDH逆境生理中具有重要作用。

測定原理：

6PGDH催化6-磷酸葡萄糖酸和NADP+生成NADPH，NADPH在340 nm有特征吸收峰，而NADP+沒(méi)有；通過(guò)測定340nm吸光度增加速率，計算6PGDH活性。

組成：

自備儀器和用品：

紫外分光光度計、低溫離心機、水浴鍋、可調式移液槍、1ml石英比色皿和蒸餾水。

粗酶液提取：

1、細菌、細胞或組織樣品的制備：

細菌或培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（10⁴個(gè)）：提取液體積（ml）為1000~5000：1的比例（建議2000萬(wàn)細菌或細胞加入1ml提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10s，重復30次）；8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。

組織：按照組織質(zhì)量（g）：提取液體積(ml)為1：5~10的比例（建議稱(chēng)取約0.1g組織，加入1ml提取液），進(jìn)行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。

2、血清（漿）樣品：直接檢測。

測定步驟：

1. 分光光度計預熱30min，調節波長(cháng)到340 nm，蒸餾水調零。

2. 將試劑二和試劑三轉移至試劑一中充分溶解；在37℃（哺乳動(dòng)物）或25℃（其它物種）水浴10min以上；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

3. 取1ml石英比色皿，依次加入50μl樣本和950μl試劑一，于340nm處測定3min內吸光值變化，第10 s吸光值記為A1，第190s吸光值記為A2。△A=A2-A1

注意：空白管只需要做一次。

6PGDH活性計算公式

1、血清（漿）6PGDH活力的計算:

單位的定義：每ml血清（漿）每分鐘生成1 nmol的NADPH定義為一個(gè)酶活力單位。

6PGDH（nmol/min/ml）＝[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹]÷V樣÷T=1071.8×ΔA

2、組織、細菌或細胞中6PGDH活力的計算:

（1）按樣本蛋白濃度計算：

單位的定義：每mg組織蛋白每分鐘生成1 nmol NADPH定義為一個(gè)酶活力單位。

6PGDH（nmol/min /mg prot）＝[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹]÷(V樣×Cpr) ÷T=1071.8×ΔA÷Cpr

（2）按樣本鮮重計算：

單位的定義：每g組織每分鐘生成1 nmol NADPH定義為一個(gè)酶活力單位。

6PGDH（nmol/min /g 鮮重）＝[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹]÷(W× V樣÷V樣總) ÷T=1071.8×ΔA÷W

（3）按細菌或細胞密度計算：

單位的定義：每1萬(wàn)個(gè)細菌或細胞每分鐘生成1 nmol NADPH定義為一個(gè)酶活力單位。

6PGDH（nmol/min /10⁴ cell）＝[ΔA×V反總÷（ε×d）×10⁹]÷(2000×V樣÷V樣總) ÷T=0.536×ΔA

V反總：反應體系總體積，1×10^-3 L；ε：NADPH摩爾消光系數，6.22×10³ L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm；V樣：加入樣本體積，0.05 ml；V樣總：加入提取液體積，1 ml；T：反應時(shí)間，3 min；Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/ml；W：樣本質(zhì)量，g；2000：細菌或細胞總數，2000萬(wàn)。