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    常規PCR,環(huán)介導的恒溫PCR(LAMP),重組酶聚合酶擴增(RPA)三種分子擴增技術(shù)原理和對比

    常規PCR,環(huán)介導的恒溫PCR(LAMP),重組酶聚合酶擴增(RPA)三種分子擴增技術(shù)原理和對比

    常規PCR

           PCR即聚合酶鏈式反應(Polymerase chain reaction)的縮寫(xiě),1983年出現的一種對已知DNA片段進(jìn)行體外擴增的技術(shù)。它利用耐高溫的DNA聚合酶(Taq 酶),將模板DNA,引物,脫氧核苷三磷酸(dNTP)和緩沖液等在不同溫度間循環(huán),從而達到雙鏈DNA分離,引物粘合到模板上的互補區間,最后在DNA聚合酶作用下脫氧核苷三磷酸逐個(gè)添加到新合成的DNA鏈上的過(guò)程。通過(guò)PCR技術(shù),特定DNA片段可以達到指數級別的擴增,從原來(lái)的少量DNA分子擴增到可以用儀器檢測的水平,利用這一特點(diǎn)可以對一些特異的病原或疾病標志物進(jìn)行診斷。


           近幾年,由于PCR技術(shù)的不斷成熟,特別是實(shí)時(shí)熒光定量PCR(qPCR)的出現,使得基于qPCR的分子診斷產(chǎn)品日漸成為主流。但常規的PCR技術(shù)由于熱循環(huán)的需要,使這一技術(shù)完全依賴(lài)于電源和昂貴的PCR儀器,從而限制了這一技術(shù)在實(shí)驗室之外的應用。由于這些缺點(diǎn),科學(xué)界一直在試圖發(fā)展不需要使用PCR儀器的核酸擴增方法,恒溫核酸擴增技術(shù)的發(fā)展成為一個(gè)不可逆轉的趨勢。
    主要的步驟:
    ★DNA變性 加熱使靶DNA序列雙鏈解離成單鏈DNA。
    ★引物與靶DNA退火 適當降低溫度,使兩個(gè)引物分別結合成靶DNA兩條的3′末端向5′末端延伸。
    ★引物延伸 在DNA聚合酶的催化下,引物沿著(zhù)靶DNA3′末端向5′末端延伸。新合成的DNA鏈在變性解離后,又可作為模板與引物雜交,并且在DNA聚合酶的催化下,引導合成新的靶DNA鏈。如此反復進(jìn)行以上3個(gè)步驟,即可使靶DNA片段指數性擴增。


    環(huán)介導恒溫核酸擴增(LAMP
           環(huán)介導恒溫核酸擴增(LAMP)是日本學(xué)者Notomi等在2000年發(fā)表的一種核酸擴增的方法,他利用特殊的引物設計方法和恒溫核酸鏈置換酶將少量目標DNA在60分鐘內擴增到千百萬(wàn)份。LAMP反應中需要4-6個(gè)引物,這些引物特異性的識別模板DNA的6-8個(gè)DNA區間。在每一套LAMP的引物中,包括兩個(gè)外部引物(F3和B3),兩個(gè)內部引物(FIP和BIP)以及兩個(gè)環(huán)導引物(loop F和loop B)。LAMP引物設計和反應原理如圖1所示。



          LAMP的反應混合物由dNTPs,鏈置換聚合酶,熒光染料,引物和DNA模板組成。用于LAMP反應的引物設計,其特征在于使用四種不同的引物,這些引物是專(zhuān)門(mén)設計用于識別靶DNA的六個(gè)不同區域的。前內引物(FIP)由3' 末端的F2區和5' 末端的F1c區組成;正向外引物(F3引物)由F3區組成,其與模板序列的F3c區互補;向后內部引物(BIP)由3' 末端的B2區域和5' 末端的B1c區域組成。向后外引物(B3引物)由B3區組成,其與模板序列的B3c區互補。當FIP的F2區與靶DNA的F2c區雜交并啟動(dòng)互補鏈合成時(shí),擴增開(kāi)始,然后F3引物與靶DNA的F3c區域雜交并延伸,取代FIP連接的互補鏈。該置換鏈在5' 末端形成環(huán),這種在5' 末端具有環(huán)的單鏈DNA然后用作BIP的模板,B2與模板DNA的B2c區域雜交,啟動(dòng)DNA合成,導致形成互補鏈并打開(kāi)5' -末端環(huán),隨后,B3與靶DNA的B3c區域雜交并延伸,置換BIP連接的互補鏈,這導致形成啞鈴形DNA。通過(guò)Bst DNA聚合酶將核苷酸添加到F1的3' 末端,其在5' 末端延伸并打開(kāi)環(huán),啞鈴形DNA現在轉變?yōu)榍o環(huán)結構(參見(jiàn)a和b)。該結構用作LAMP循環(huán)的引發(fā)劑,其是LAMP反應的第二階段。也可以添加環(huán)引物用于LAMP的指數擴增,獲得的最終產(chǎn)品是具有不同莖長(cháng)度的莖環(huán)DNA和具有多個(gè)環(huán)的各種類(lèi)似于菜花的結構的混合物。



    重組酶聚合酶擴增(RPA)

          重組酶聚合酶擴增(RPA),被稱(chēng)為是可以替代PCR的核酸檢測技術(shù)。RPA技術(shù)主要依賴(lài)于三種酶:能結合單鏈核酸(寡核苷酸引物)的重組酶、單鏈DNA結合蛋白(SSB)和鏈置換DNA聚合酶。這三種酶的混合物在常溫下也有活性,最佳反應溫度在37℃左右。重組酶與引物結合形成的蛋白-DNA復合物,能在雙鏈DNA中尋找同源序列。一旦引物定位了同源序列,就會(huì )發(fā)生鏈交換反應形成并啟動(dòng)DNA合成,對模板上的目標區域進(jìn)行指數式擴增。被替換的DNA鏈與SSB結合,防止進(jìn)一步替換。在這個(gè)體系中,由兩個(gè)相對的引物起始一個(gè)合成事件(見(jiàn)圖2)。整個(gè)過(guò)程進(jìn)行得非???,一般可在十分鐘之內獲得可檢出水平的擴增產(chǎn)物 (Piepenburg等,2006)。

          RPA不但可以快速擴增,還支持在同一個(gè)管中同時(shí)進(jìn)行多個(gè)擴增反應。不過(guò),多重化的引物組合需要精心設計,以便每個(gè)引物都能同樣有效的工作。需要注意的是,RPA反應的引物總量(nmol)最好不要超標太多。如果在一個(gè)反應中使用兩個(gè)以上的擴增引物,就應該控制不同引物的量。另外,檢測多個(gè)擴增事件的探針、設備以及熒光物質(zhì)的兼容性都需要提前考慮。RPA還可以對模板進(jìn)行定量。因為擴增產(chǎn)物達到可檢出水平的時(shí)間,是依賴(lài)于反應起始時(shí)的模板量。初始模板的拷貝越多,擴增產(chǎn)物就越快達到可檢出水平。不過(guò),這種定量需要精心的實(shí)驗安排,確保對照反應是同時(shí)開(kāi)始的。舉例來(lái)說(shuō),可以利用鎂離子的添加時(shí)間進(jìn)行控制。因為鎂離子一旦進(jìn)入體系,RPA反應就會(huì )開(kāi)始。此外,較慢的擴增過(guò)程有助于更精確的定量。我們可以通過(guò)調整反應條件或引物設計來(lái)減慢RPA的反應速度。目前大多數RPA相關(guān)產(chǎn)品還是由英國的Twist Dx開(kāi)發(fā)的。

    重組酶/引物復合物尋找模板DNA的同源序列(紅色/藍色)。鏈交換后,置換的鏈由gp32(綠色)結合,引物通過(guò)Bst聚合酶(藍色)延伸。兩個(gè)引物結合/延伸最終產(chǎn)生一個(gè)完整的擴增拷貝。重復該過(guò)程導DNA指數擴增。(Piepenburg等,2006)


    簡(jiǎn)短技術(shù)對比圖



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