測定意義：

CL（EC 3.2.1.4）存在于細菌、真菌和動(dòng)物體內，能夠催化纖維素降解，是一類(lèi)可廣泛應用于醫藥、食品、棉紡、環(huán)保及可再生資源利用等領(lǐng)域的酶制劑。

測定原理：

采用蒽酮比色法測定CL催化羧甲基纖維素鈉降解產(chǎn)生的還原糖的含量。

組成：

試劑三：粉劑×1瓶，4℃保存； 臨用前加入5ml蒸餾水和45ml濃硫酸充分溶解待用。 

自備儀器和用品：

可見(jiàn)分光光度計、水浴鍋、可調式移液器、1ml玻璃比色皿、研缽、冰、濃硫酸和蒸餾水。

樣品測定的準備： 

1、細菌或培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（10⁴個(gè)）：提取液體積（ml）為500~1000：1的比例（建議500萬(wàn)細菌或細胞加入1ml提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10s，重復30次）；8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。

2、組織：按照組織質(zhì)量（g）：提取液體積(ml)為1：5~10的比例（建議稱(chēng)取約0.1g組織，加入1ml提取液），進(jìn)行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。

3、血清（漿）樣品：直接檢測。

測定步驟：

1、 分光光度計預熱30min以上，調節波長(cháng)至620nm，蒸餾水調零。

2、加樣表（在EP管中依次加入下列試劑）：

37℃振蕩反應1h后，90℃水浴15min（蓋緊，防止水分散失），冷卻后

8000g 25℃離心10min，取上清，得糖化液

混勻， 90℃水浴10min（蓋緊，防止水分散失），冷卻，620nm處蒸餾水調零，測定吸光值A，計算ΔA=A測定管-A對照管。每個(gè)測定管設一個(gè)對照管。

CL活力計算：

1、標準條件下測定的回歸方程為y = 5.018x - 0.0462；x為標準品濃度（mg/ml），y為吸光值。

2、血清（漿）CL活力的計算

單位的定義：每ml血清（漿）每分鐘催化產(chǎn)生1μg 葡萄糖定義為一個(gè)酶活力單位。

CL活力(μg /min/ml)= [1000×(ΔA+0.0462) ÷5.018×V反總]÷V樣÷T =39.8×(ΔA+0.0462)

3、細胞、細菌和組織中CL活力的計算

（1）按照蛋白濃度計算

單位的定義：每mg組織蛋白每分鐘催化產(chǎn)生1μg 葡萄糖定義為一個(gè)酶活力單位。

CL活力(μg /min/mg prot)=[1000×(ΔA+0.0462) ÷5.018×V反總]÷(V樣×Cpr) ÷T

=39.8×(ΔA+0.0462) ÷Cpr

（2）按樣本鮮重計算

單位的定義：每g組織每分鐘催化產(chǎn)生1μg 葡萄糖定義為一個(gè)酶活力單位。

CL活力(μg /min /g鮮重)=[1000×(ΔA+0.0462) ÷5.018×V反總]÷(W× V樣÷V樣總) ÷T

=39.8×(ΔA+0.0462) ÷W

（3）按細菌或細胞密度計算

單位的定義：每1萬(wàn)個(gè)細菌或細胞每分鐘催化產(chǎn)生1μg 葡萄糖定義為一個(gè)酶活力單位。

CL活力(μg /min /10⁴ cell)=[1000×(ΔA+0.0462) ÷5.018×V反總]÷(500×V樣÷V樣總) ÷T

=0.0796×(ΔA+0.0462)

1000：1mg/ml=1000ug/ml；V反總：反應體系總體積，1.2ml； V樣：加入樣本體積，0.1 ml；V樣總：加入提取液體積，1 ml；T：反應時(shí)間，60 min；Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/ml；W：樣本質(zhì)量，g；500：細菌或細胞總數，500萬(wàn)。